染色質免疫沉淀（ChIP）是目前研究體內DNA與蛋白質相互作用的重要工具。雖然ChIP技術的原理不復雜，但是對技術的要求高，實驗步驟的設計摸索耗時耗力，實驗耗費時間長。也許您從未開展過ChIP，也許您的ChIP結果有待改善，那么，可以看看下面的4點建議。

是否需要交聯(lián)？

交聯(lián)的目的是將感興趣的抗原固定在其染色質結合位點。若沒有交聯(lián)的步驟，就意味著只有與染色質結合非常緊密的蛋白質能被免疫沉淀，譬如組蛋白。若您的研究對象是組蛋白，那可能不需要交聯(lián)，而其他蛋白，如轉錄因子和DNA結合復合物中包含的蛋白，可能還需要交聯(lián)。如果使用交聯(lián)，則ChIP反應被稱為X-ChIP，則天然的ChIP反應被稱為N-ChIP。然而，確實有一些抗原不適合用X-ChIP這種方式，因為在交聯(lián)過程中它們的表型會發(fā)生變化，或出現(xiàn)包涵體。

片段化要小心：

染色質必須片段化，才能讓相互反應接觸到抗體。無論您采用哪種方法，都必須確保一定的片段化時間進程。對于X-ChIP，超聲波處理是必需的，因為甲醛交聯(lián)限制了酶切的效果。超聲波處理的條件要自己來優(yōu)化，不過說明書上通常都會給出一個參考條件。超聲波產生了隨機的DNA片段（平均500-700 bp）。在開展N-ChIP時，微球菌核酸酶的消化可產生~175 bp的單體。酶切消化的優(yōu)勢在于消化的重復性好，易控制反應。

抗體用對沒有？

如果可以的話，使用經過充分驗證、ChIP級別的抗體。當然，這種抗體并不多。如果沒有，也可以選擇普通的免疫沉淀抗體，或能夠識別天然表位的抗體。一般來說，多克隆抗體是個更好的選擇，因為單克隆抗體只識別單個表位，而這個表位有可能在交聯(lián)過程中被掩蓋。而另一方面，單克隆抗體卻往往有著更好的批間一致性。抗體的量和使用的條件都應根據(jù)使用經驗來確定。一般情況下可以從每50ug DNA使用2-5ug抗體作為起始條件開始摸索。

對照也很重要

作為ChIP技術的陽性對照，H3K4me3和H3K9me3分別適用于激活和失活的基因。作為陰性對照，可選擇一個識別非染色質表位的抗體，如GFP抗體。但要記住，這些抗體本身不是陽性和陰性對照，因為這取決于您正在研究的位點。如果在您研究的位點無H3K4me3，即使是的ChIP級別的H3K4me3抗體也不能讓任何東西免疫沉淀，那么這就不是一個理想的陽性對照。如果您的實驗室剛剛開始用ChIP，考慮購買試劑盒。

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