以下是類器官培養中雜質細胞和干擾因子問題的系統性解決方案,結合前沿技術與實際應用,分為雜質細胞清除策略和干擾因子控制策略兩部分展開:
流式細胞分選(FACS)與磁珠分選(MACS):利用腫瘤細胞表面特異性抗原(如 EpCAM、CD44)標記熒光抗體或磁珠,通過物理分選實現腫瘤細胞富集。優化方向可結合多參數標記(如同時標記腫瘤抗原和正常細胞陰性標志物)提升純度,適用于實體瘤單細胞懸液分選。例如在結直腸癌類器官構建中,通過 CD133?/EpCAM?雙陽性分選,腫瘤細胞純度可從混合樣本的 30% 提升至 90% 以上。
微流控芯片分選:基于細胞大小、變形能力或表面電荷差異實現單細胞級別精準分選,損耗率低于傳統 FACS。芯片內可集成免疫捕獲模塊,實時捕獲循環腫瘤細胞(CTCs)用于類器官建模,避免正常血細胞污染。
代謝通路調控培養基:利用腫瘤細胞特異性營養偏好設計培養基,如高乳酸環境抑制正常成纖維細胞增殖,同時維持腫瘤細胞糖酵解代謝;添加 PKM2 抑制劑(如 TEPP-46)阻斷正常細胞有氧呼吸,選擇性促進腫瘤細胞存活。也可通過細胞周期同步化技術,使用 CDK4/6 抑制劑(如 Palbociclib)暫時停滯正常細胞于 G1 期,允許腫瘤細胞優先增殖。
三維培養環境調控:利用基質硬度差異分離細胞,腫瘤細胞更適應高硬度基質(如 10-20kPa),正常上皮細胞傾向低硬度環境(1-5kPa),可通過梯度水凝膠實現空間分離。此外,在培養腔室中構建乏氧區域(1-3% O?),可誘導腫瘤細胞干性維持,抑制正常細胞過度生長。
CRISPR-Cas9 標記剔除:在正常細胞中轉入熒光標記 + 基因(如 iCaspase9),通過流式分選剔除熒光陽性細胞,或在培養中添加誘導劑(如 AP20187)選擇性清除正常細胞。例如在肝癌類器官中,針對正常肝細胞表達的 ALB 基因設計 sgRNA,結合 Dox 誘導的 Cas9 表達,可實現正常細胞定向清除。
條件性永生化技術:對腫瘤細胞進行 hTERT 永生化改造,同時在正常細胞中引入溫度敏感型致死基因(如 tsT 抗原),通過溫度切換(39℃抑制正常細胞)實現選擇性培養。

標準化質控體系:建立類器官純度(如腫瘤細胞占比≥95%)和基質人源化程度(動物成分<0.01%)的行業標準;
單細胞多組學監測:通過單細胞 RNA 測序(scRNA-seq)和質譜流式(CyTOF)動態追蹤雜質細胞和干擾因子的影響路徑;
全人源類器官平臺:結合 iPSCs 來源的基質細胞(如成纖維細胞、內皮細胞)構建自主的培養微環境,排除異源成分。
通過技術整合與流程優化,上述方案可顯著提升類器官模型的可靠性,為腫瘤藥敏測試、個性化醫療等應用奠定基礎。實際操作中建議結合具體器官類型(如胃腸、肝臟類器官)選擇組合策略,并通過預實驗驗證分選效率和基質兼容性。更多類器官培養試劑請進入蘇州阿爾法生物網站進行了解。