甲型流感病毒 H1N1-2009(IAV-H1-2009)核酸檢測試劑盒(RT-PCR 熒光探針法)
【產品名稱】
商品名稱:甲型流感病毒 H1N1-2009(IAV-H1-2009)核酸檢測試劑盒(RT-PCR 熒光探針法)
Name :Diagnostic Kit for Influenza A virus subtype H1-2009 RNA (RT-PCR Fluorescence Probing)
【包裝規格】48 份/盒
【預期用途】
本試劑盒適用于檢測的咽拭子標本等標本中甲型流感病毒 H1N1-2009RNA, 適用于甲型流感病毒 H1N1-2009 感染的輔助診斷。其檢測結果僅供參考。
【檢驗原理】
本試劑盒用一對甲型流感病毒 H1N1-2009 特異性引物,結合一條特異性熒光探針,用一步法熒光 RT-PCR 技術對甲型流感病毒 H1N1-2009RNA 進行體外擴增檢測,用于臨床上對可疑感染者的病原學診斷。
【試劑組成】
【儲存條件及有效期】
-20℃±5℃,避光保存、運輸、反復凍融少于 5 次,
有效期 12 個月。
【適用儀器】
ABI 7300、7500、ABI stepone / stepone plus 、安捷倫 MX3000P/3005P、MJ Opticon2 等其他熒光定量 PCR 檢測儀。
【標本采集】
采集病人或患病動物的咽拭子標本,應使用專用采樣拭子,適度拭抹咽后壁和兩側扁桃體部位,應避免觸及舌部;迅速將拭子放入標本采集管中,旋緊管蓋并密封, 以防干燥。
【保存和運輸】
上述標本短期內可保存于-20℃,長期保存可置-70℃,但不能超過 6 個月,標本運送應采用 2~8℃冰袋運輸,嚴禁反復凍融。
【使用方法】
1. 樣品處理(樣本處理區)
1.1 樣本前處理
取100uL 拭子標本于1.5mL 滅菌離心管中,按RNA 提取試劑盒說明書進行提取。
1.2 RNA 提取
推薦采用廣州維伯鑫生物科技有限公司生產的 RNA 提取試劑盒(離心柱提取法),請按照試劑盒說明書進行操作。
2. 試劑配制(試劑準備區)
根據待檢測樣本總數,設所需要的 PCR 反應管管數為 N(N=樣本數+1 管陰性對照+1 管陽性對照;樣品每滿 7 份,多配制 1 份),每測試反應體系配制如下表:
試劑 | IAV-H1-2009 反應液 | 酶液 |
用量 | 20μl | 1μl |
3. 加樣(樣本處理區)
將步驟 1 提取的 RNA、陽性質控品、陰性質控品各取 4μl,分別加入相應的反應管中,蓋好管蓋,混勻,短暫離心。
4. PCR 擴增(核酸擴增區)
4.1 將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內;
4.2 設置好通道、樣品信息,反應體系設置為 25ul;熒光通道選擇:
檢測通道(Reporter Dye)FAM, 淬滅通道(Quencher Dye)NONE,請勿選擇 ROX 參比熒光。
4.3 推薦循環參數設置:
5. 結果分析判定
5.1 結果分析條件設定
設置 Baseline 和 Threshold:一般直接按機器自動分析的結果分析,當曲線出現整體傾斜時,根據分析后圖像調節 Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范圍內調節)、stop 值(一般可在 5~20 范圍內調節),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖動閾值線至高于陰性對照),重新分析結果。
5.2 結果判斷
陽性:檢測通道 Ct 值≤35.0,且曲線有明顯的指數增長曲線;
可疑:檢測通道 35.0<Ct 值≤37,建議重復檢測,如果檢測通道仍為 35.0<Ct 值≤37,且曲線有明顯的增長曲線,判定為陽性,否則為陰性;
陰性:樣本檢測結果 Ct 值>37 或無 Ct 值。
6. 檢測方法的局限性
? 樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關;
? 樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會出現假陽性結果;
? 陽性對照、擴增產物泄漏,會導致假陽性結果;
? 病原體在流行過程中基因突變、重組,會導致假陰性結果;
? 不同的提取方法存在提取效率差異,會導致假陰性結果;
? 試劑運輸,保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降,出現假陰性或定量檢測不準確的結果;
? 本檢測結果僅供參考,如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。
7. 質控標準
陰性質控品:無明顯擴增曲線或無 Ct 值顯示;
陽性質控品:擴增曲線有明顯指數生長期,且 Ct 值≤32; 以上條件應同時滿足,否則實驗視為無效。
8. 產品性能指標
陰陽性參考品符合率:5 份陽性參考品符合率為 100%;10 份陰性參考品符合率為 100%。
檢測限:5.0×102copies/ml。
精密度:批內、批間精密度檢測 Ct 值的變異系數(CV)均小于等于 3%。
【注意事項】
? 所有操作嚴格按照說明書進行;
? 試劑盒內各種組分使用前應自然融化,*混勻并短暫離心;
? 反應液應避光保存;
? 反應中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;
? 使用一次性吸頭、一次性手套和各區專用工作服;
? 樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區進行,以免交叉污染;
? 實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器;
? 試劑盒里所有物品應視為污染物對待,并按照《微生物生物醫學實驗室生物安全通則》進行處理。.
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