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材料與儀器

Triton X-100 勻漿緩沖液 酚 氯仿 乙酸鈉 乙醇 氯化鋰

步驟

一 材料與設備
1)5%TritonX-100
2) 勻漿緩沖液：50 mmol/LNaCl,50 mmol/LTris-Cl,(PH7.5),5 mmol/LEDTA(pH8.0),0.5%SDS,200ug/ml 蛋甶酶 K
3) 酚：氯仿 (1:1)
4)3mol/L 乙酸鈉 (pH5.2)。
5) 乙醇
6)8mol/L 氯化鋰
二 操作方法
1) 將待處理的組織放置下一個干烤過的玻璃勻漿器內，棄去無關的液體，用 0.5% TriwnX-100 洗滌蠅胚，以去除培養基。
2) 加 10 倍體積的勻漿緩沖液、立即研磨使組織che底勻漿化。
3) 于 37℃ 將組織勻漿溫育 l h, 間或混勻之。
4）將勻漿移至離心管內，加等體積酚：氯仿（1:1)，劇烈振蕩 1 min，用吊桶式轉頭于室溫以 5000 g 離心 l0mim, 使水相和有機相分開。
5) 將上層水相移至另一離心管內. 按步驟 4 用酚：氯仿（1:1) 再抽提 1 次。
6) 將水相移至為-管內，加 0.1 體積 3mol/L 乙酸鈉 (PH5.2)，混勻，加 2.5 倍體積冰預冷的乙醇，冰浴 2 h
7) 于 4°C 以 5000 g 離心 l5 min，小心去除上淸液，室溫晾下 RNA 沉淀. 少量水溶解RNA, 加 3 倍體積乙酔，于—70℃ 儲存備用.如要除去糖蛋白和卵黃物質，則可根據需要逬行步驟 8)?11)
8) 用少量水重溶 RNA 沉淀，加等體積經髙壓滅菌的 8mol/L 氯化鋰，混勻，一 20℃放置 3 h 以上。
9) 于 4℃ 以 10000 g 離心 30 min 沉淀 RNA, 小心棄上清。
10) 用 70% 乙醇洗滌沉淀，離心片刻，棄去上清液. 于空氣中晾干核酸沉淀。
11) 用少量水重溶 RNA, 加 3 倍體積乙醇，于 一 70℃ 儲存備用。

注意事項

1) 用氯化鋰沉淀 RNA 從而有助于去除糖蛋白和卵黃物質
2) 由于此方法分離的 RNA 量大超過污染的 DNA 量，因此不必除去制品中的 DNA。盡管污染的基因組 DNA 序列不干擾雜交和翻譯，但如果此 RNA 用于構建 cDNA 文庫，則這些 DNA 可能會引起混亂，在這種情況下吋用無 RNA 酶的胰 DNaseI 進行消化，以去除污染的 DNA

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