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當(dāng)前位置:深圳市安培生物科技有限公司>>技術(shù)文章>>PEG 介導(dǎo)的脾細胞與骨髓瘤細胞的融合
簡介
細胞融合的方法有生物法、化學(xué)法和物理法。化學(xué)法常用的是化學(xué)誘導(dǎo)劑聚乙二醇(polyethylene glycol,PEG)結(jié)合高 pH、高鈣離子法。該法操作方便,目前已成為人工誘導(dǎo)細胞融合的主要手段。
原理
PEG 介導(dǎo)的細胞融合的基本原理是利用 PEG 使細胞相互接觸部位的膜結(jié)構(gòu)發(fā)生重排,加之膜脂雙層的相互親和以及彼此間表面張力的作用,引起相鄰質(zhì)膜在修復(fù)時相互合并在一起,導(dǎo)致細胞之間發(fā)生融合。PEG 介導(dǎo)的細胞融合率受下述因素影響。
① PEG 的分子量與濃度:分子量及其濃度與融合率成正比;但分子量越大、濃度越高,對細胞的毒性也就越大。為了兼顧二者,常用的 PEG 相對分子質(zhì)量為 1000~4000,濃度為 40%~60%。
② PEG 的 pH 值:pH 值在 8.0~8.2 之間融合效-率-最-高。
③ 融合時的溫度:由于生物膜的流動性與溫度成正比,在細胞可承受的溫度范圍內(nèi)適當(dāng)提高溫度,可提高融合率。
④ 處理時間:處理時間越長,融合率越高,但對細胞的毒害也越大。故一般將處理時間限制在 1.0~1.5 min 之內(nèi)。若融合后不繼續(xù)培養(yǎng),可將處理時間延長至 20 min。
用途
細胞融合不僅可用于核質(zhì)關(guān)系、基因定位、體細胞的遺傳和發(fā)育等生物學(xué)的基礎(chǔ)理論研究,而且在生產(chǎn)實踐上還有重要的應(yīng)用價值,目前已成功應(yīng)用于單克隆抗體的制備、新品種的培養(yǎng)、性狀的改良、疾病的治療和潛伏病毒的研究等領(lǐng)域。
材料與儀器
① 普通低速離心機
② 恒溫水浴鍋
③ 普通光學(xué)顯微鏡
④ 血細胞計數(shù)板
⑤ 天平、剪刀、鑷子、50 ml 無菌離心管、96 孔培養(yǎng)板、培養(yǎng)皿、燒杯、吸管、蓋玻片、載玻片
試劑:
① 材料:鼠、培養(yǎng)的骨髓瘤細胞
② PBS
③ HAT 選擇培養(yǎng)液
④ HT 培養(yǎng)液
⑤ PEG(M,=4000)(50%)
步驟
(1)HAT 選擇培養(yǎng)液 常用兩種儲存液(100xHT 和 100xA)來稀釋配制 HAT 培養(yǎng)液。
① 100xHT 稱取次黃-嘌-呤 136.1 mg 和胸腺嘧啶核苷 38.8 mg,加細胞培養(yǎng)用水至 100 ml。若溶解不佳,加熱(70 ℃)助溶。100 倍儲存液中,次黃-嘌-呤濃度為 10 mmol/L,胸苷為 1.6 mmol/L。0.22 μm 濾膜過濾除菌,分裝,-20 ℃ 保存,可保存 1 年。
② 100xA 稱取氨基蝶呤 1.76 mg,溶解于細胞培養(yǎng)用水中。加 1.0 mol/L NaOH 0.5 ml 助溶,再用 1 mol/L HC1 將 pH 調(diào)回至中性,定容至 100 ml。注意勿調(diào)成酸性,因為氨基蝶呤對酸敏感。100 倍儲存液中氨基蝶呤的濃度為 0.04 mmol/L。0.22 μm 濾膜過濾除菌,分裝,-20 ℃ 保存,可保存 1 年。
③ 將 100xHT 和 100xA 各按 1:100 比例加到含小牛血清的完-全培養(yǎng)基中,即成 HAT 選擇培養(yǎng)液。其中各成分的最終濃度分別為:H,1x10-4 mol/L;A,4x10-7 mol/L;T,1.6x10-5 mol/L。
(2)100xHT 培養(yǎng)液 10 mmol/L 次黃-嘌-呤鈉鹽;1.6 mmol/L 胸腺嘧啶脫氧核苷。
(1)處死動物并用乙醇擦拭腹部,剖開腹部暴露脾臟。
(2)用滅菌的鑷子和剪刀取出脾臟,置于一盛有 50 ml 滅菌 PBS 的燒杯中,洗去血污。
(3)把脾臟移入一盛有 20 ml 滅菌 PBS 的培養(yǎng)皿中。除去所有的多余組織和脂肪,并用 PBS 沖洗脾臟。
(4)把脾臟移入盛有 20 ml 滅菌 PBS 的培養(yǎng)皿,用滅菌的剪刀、鑷子剪碎組織,制成單細胞懸液。
(5)收集細胞于 50 ml 離心管,用 10 ml 滅菌的 PBS 清洗培養(yǎng)皿并轉(zhuǎn)移入離心管。靜置 1 min。
(6)小心把細胞懸液移入一新的離心管,不要讓管底的組織塊一并轉(zhuǎn)入。
(7)用 10 ml 滅菌的 PBS 清洗有組織塊的離心管,靜置 1 min 后小心移出細胞懸液,并和上一次的細胞懸液混合。
(8)室溫下以 800 g 離心 5 min。
(9)小心棄上清液。用 50 ml 滅菌的 PBS 重懸細胞,重復(fù)離心。
(10)小心棄上清液。在 10 ml 滅菌的 PBS 中重懸細胞。
(11)取 1 滴進行細胞計數(shù)。
(1)從 2~4 個培養(yǎng)瓶中收集處于對數(shù)生長期的骨髓瘤細胞。
(2)用滅菌的 PBS 清洗細胞,800 g 離心 5 min。
(3)重復(fù)洗滌、離心一次。
(4)用 10 ml 滅菌的 PBS 重懸細胞。
(5)取 1 滴進行細胞計數(shù)。
(1)以 3:1~5:1(脾細胞:骨髓瘤細胞)的比例在 50 ml 離心管中混合脾細胞和骨髓瘤細胞(細胞總數(shù)約為 106)。室溫下 800 g 離心 5 min。
(2)盡可能地棄去上清液。輕叩管底使沉淀松動,置 37 ℃(39 ℃ 更佳)水浴中預(yù)溫。
(3)緩慢逐滴加入 1 ml 37 ℃ 預(yù)溫的 50% PEG 溶液,邊加邊輕搖混勻,加完后用吸管輕輕吹打混勻。37 ℃ 靜置 1 min。
(4)用 20 ml 滅菌的 PBS 稀釋 PEG。注意動作一定要緩慢,尤其是開始稀釋時(最初 1 ml 在 1 min 內(nèi)加完,之后可加快速度)。800 g 離心 5 min,棄上清液。
(5)重復(fù)洗滌、離心一次。
(6)棄上清。在 HAT 培養(yǎng)液中重懸沉淀,使細胞密度為 5x105 個/ml
(7)轉(zhuǎn)入 96 孔培養(yǎng)板,每孔 0.2 ml。在 CO2 培養(yǎng)箱中 37 ℃ 培養(yǎng)
5~7 d,其間根據(jù)需要換 HAT 培養(yǎng)液。
(8)觀察細胞融合結(jié)果。
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