組織細胞RNA提取試劑盒（Trizol提取法）

產品貨號：11131

產品規格：50T/100T

產品簡介：

RNA的種類來源比較多，提取制備的方法各異，一般有苯酚法、去污劑法和鹽酸胍法，其中常用的是苯酚法，即Trizol法提取RNA。 Trizol含苯酚和異硫氰酸胍等物質，能迅速裂解細胞或組織并且滅活核酸酶，保持RNA的完整性。加入氯仿并離心后，溶液形成上層為水相(無色)、中間層、下層為有機相(紅色)。上層用異丙醇沉淀回收總RNA，中間層用乙醇沉淀回收DNA，下層用異丙醇沉淀回收蛋白。組織細胞RNA提取試劑盒(Trizol提取法)適用于從各種組織或細胞中快速分離總RNA，既可用于小量樣品(50～100mg組織、5×106細胞)，也可用于大量樣品(>1g組織/>107細胞)。提取的總RNA質量高，可用于Northern blot、Dot blot、polyA篩選、體外翻譯、RNase保護分析和分子克隆。本產品具有以下特點：①適用范圍廣；②操作簡單，整個過程1小時內完成；③純度高；④污染少。

產品組成：

        試劑(F): RNA 保存液              10ml               20ml        4℃，避光

自備材料：

1. 液氮\研缽或勻漿器

2. 經 RNase free 處理的移液器吸頭、EP 管等耗材

3. 低溫高速離心機、低溫冰箱

操作步驟(僅供參考)：

1. 樣品準備

   ⑴ 貼壁細胞：①直接裂解：直接在培養瓶/皿中加入 Trizol 裂解細胞，每 10cm2面積加 1ml，用移液器吹打混勻。②胰蛋白酶消化：用無菌 PBS 洗滌細胞后，加入含有 0.05～0.25%胰蛋白酶的 PBS 處理細胞，當細胞脫離容器壁后，加入含有血清的培養基終止反應，將細胞溶液轉移至無 RNase 的離心管中，以下參考懸浮細胞相關操作步驟。

   ⑵ 懸浮細胞：無需清洗細胞，直接 5000～6000g 離心 5min，收集細胞沉淀，去除上清。收集細胞時一定要將細胞培養液去除干凈，否則裂解不*，降低 RNA 收獲率。每 5×106～107，動物、植物和酵母細胞或每 10 細菌細胞加入 1ml Trizol，充分振蕩混勻。

   ⑶ 組織：取新鮮動物或者植物組織或者-70℃凍存組織，50～100mg 組織在液氮中充分研磨或者加入 1ml Trizol研磨或者用勻漿器勻漿處理。樣品體積一般不超過 Trizol 體積的 10 %。研磨要迅速，以 1min 為佳。⑷ 血液：取 0.5～1 ml 新鮮或凍存的血液，12000g 離心 5 min，去除血漿，加入 1 ml Trizol，充分振蕩混勻。
   

2. 核酸分離：充分振蕩混勻(可以置于低溫/超低溫冰箱凍存 5～10 min 后，充分振蕩，反復 1～3 次)。將裂解樣品或勻漿液室溫靜置 5～10min，使核蛋白與核酸*分離。

3. 樣品分層：加入 0.2 ml RNA 分離液，振蕩 15 s，室溫靜置 2～3min。12000 g 4℃離心 10～15 min。上層為水相，中間層和下層為有機相，RNA 在上層水相。4. 沉淀 RNA：吸取上層水相(約 500μl)轉移至無 RNase

4. 沉淀 RNA：吸取上層水相(約 500μl)轉移至無 RNase 的離心管中(不要吸取任何中間層物質,否則會有染色體DNA 污染)，加入等體積 RNA 沉淀液混勻，室溫放置 15～20min。12000 g 4℃離心 10min，離心后管側或管底形成膠狀沉淀，棄上清。

5. 洗滌 RNA：加入 1ml RNA 洗滌液輕輕洗滌沉淀，室溫放置 5～10min，7500g 4℃離心 5min，棄上清。室溫干燥 5～10min，不宜過分干燥，否則 RNA 難以溶解。

6. 溶解 RNA：加入 30～50ul RNase-free dd H 2 O 充分溶解，-70℃長期保存或直接用于后續試驗。對于肝、胰腺、腎等組織中 RNase 含量高的樣品沉淀用 RNA 保存液溶解。

注意事項：

1. 樣品保存：加入 Trizol 混勻后，樣品可在-70℃放置 1～2 月；RNA 樣品可以在 70%酒精中-70℃保存 2～4周：如果需要長期保存，應置于超低溫冰箱中保存

2. Trizol Reagent 和 RNA 分離液含有腐蝕性物質，污染皮膚或眼睛后，立即用清水或生理鹽水沖洗，必要時尋求醫生的幫助。

3. 為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。

有效期：12個月有效。