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細胞培養基質膠套裝B-P-00002在細胞侵襲實驗的步驟
閱讀：712 發布時間：2022-2-14Catalog No. B-P-00002-2、B-P-00002-4、B-P-00002-10
Specification 2ml-kit、4ml-kit 、10ml-kit
Storage 4℃保存、 保存兩年
細胞侵襲實驗準備程序
A、試劑準備:
1、C緩沖溶液 (0.5 X) 制備 : 使用37 ℃水浴回溫的無血清細胞培養液 (例如: 無血清DMEM等，用于稀釋A膠) 稀釋C緩沖溶液 (10 X) (貨號: B-P-00002-C)至C緩沖溶液 (0.5 X), 即體積稀釋20倍。使用前放置37度水浴槽。 (例如:1 mL C緩沖溶液 (10 X) + 19 ml 無血清DMEM; 如未使用完畢，可保存于4 ℃ 冰箱, 保存一周)
2、A膠 (1X) 制備 : 將 A膠 (2X) (貨號: B-P-00002-A) 置于37 ℃水浴槽回溫10分鐘，確認*溶解。再將37 ℃水浴回溫的無血清細胞培養液取 0.5 mL，加至37 ℃已溶解的 0.5 mL A膠 (2X)，配置成1 mL 的 A膠 (1X)。使用前置于37度，可降低A膠黏度。(單次使用，勿重復冷凍解凍 A膠 (1X) )
B、細胞侵襲實驗步驟
1、準備適用24孔板的Transwell裝置(例如:康寧Transwell insert, 8 μm PET membrane)。
2、用37 ℃已回溫的C緩沖溶液 (0.5 X)將A膠 (1X) 原液體積稀釋5-20倍，建議一開始可選用15倍。 (根據細胞種類做稀釋比例對比實驗，找出適合自己實驗體系的稀釋倍數，稀釋倍數越高，膠體越軟，越容易穿透)
3、根據Transwell上室底部面積加入步驟2的 0.1 mL 稀釋后的A膠稀釋液到Transwell上室中。
4、將步驟4在 4 ℃ 冰箱孵育2-3小時。
5、在Transwell上室中加入0.1 mL 無血清的細胞懸液，使細胞最終濃度約7.5 x 104 cells/well.。
6、在Transwell下室中加入0.8 mL 含10 %血清的細胞培養液做為chemoattractant，吸引細胞進行遷移及分泌基質蛋白酶 (MMP) 侵襲。 (對照組為Transwell下室中加入含0.8ml無血清的細胞培養液)。
7、將細胞培養板在37 ℃, 5 % CO2培養箱孵育24-48 小時。
8、移除培養液，以PBS 清洗2次。
9、用棉簽輕輕擦掉上層未遷移的細胞。
10、加入1 ml 100 % 甲醇室溫固定30分鐘,再以PBS 清洗2次。
11、加入 1 ml 0.1 % 結晶紫染液 ( 0.1 % (g/ml) PBS 結晶紫) 室溫染色20 分鐘，再以PBS 清洗2次。
12、將Transwell移至載玻片上，在顯微鏡下隨機6-9個視野觀察計算遷移的細胞數