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    E14 小鼠胚胎干細胞說明書

    閱讀:593        發布時間:2023-11-01
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      上海晅科生物科技有限公司

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    小鼠胚胎干細胞

    ES-E14TG2a

     細胞描述:

    小鼠胚胎干細胞。該細胞缺乏 HGPRT(HPRT),并且對 0.06 mM 的 6-硫鳥嘌呤有抗性。當在飼養層(胚胎成纖維細胞或 STO 細胞)上培養時,細胞保持未分化狀態。在沒有飼養層的情況下,細胞自發分化并形成胚胎結構。當注入胚泡中時,細胞可以進入生殖系。在常規的分子基因修飾技術之后,它們可用于重構小鼠胚胎。培養時需使用昆明白MEF作為飼養層細胞。

     

    細胞特性

    1)  來源:小鼠,129/Ola品系,胚胎內細胞團

    2)  形態:球形克隆 貼壁生長

    3)  含量:>1x106  細胞數

    4)  規格:1mL凍存管包裝

    5)  用途:僅供科研使用

    運輸和保存:干冰運輸:1mL凍存管包裝干冰運輸,收到后-80度冰箱保存過夜后轉入液氮或直接復蘇,若發現干冰已揮發干凈、凍存管瓶蓋脫落、破損及細胞有污染,請立即與我們聯系。

     

    一.培養基及培養凍存條件準備:

    1)準備DMEM 基礎培養基      81%     

    優質胎牛血清           15 %

    GlutaMAX-1谷氨酰胺       1 %

    MEM NEAA非必需氨基酸    1%

    Sodium Pyruvate丙酮酸鈉   1%

    P/S青霉素-鏈霉素        1%

    β-巰基乙醇       0.5 mL(1000X)

    LIF                       5μg(10ng/mL)

    使用昆明白MEF作為飼養層細胞。

    2)培養條件: 氣相:空氣,95%;二氧化碳,5%。 溫度:37℃,培養箱濕度為70%-80%。

    3)凍存液:wan全培養液 60%?,FBS 30%?,DMSO 10%?現用現配。

    我庫凍存時,體積為 500 μl,預期存活率 70%,每支凍存管的細胞復蘇,3 至4 天后,會形成 30 至 40 個克隆,建議復蘇至 1 個 T25 培養瓶中。

    二:細胞處理:

    MEF 細胞鋪制:

    1. 在 T25 培養瓶中加入 0.2%明膠,搖勻后覆蓋底面即可,于 37℃細胞培養箱至少放置 15 min 以上。

    2. 吸除 0.2%明膠,加入事先水浴加熱至 37℃的 MEFwan培養液。一般地,一個 T25 培養瓶中加入 5 ml MEF wan全培養液。

    3.  按實驗需要:小鼠胚胎干細胞使用 KM-r P3 MEF 或 CF-1 P3 MEF;復蘇 MEF 細胞若干支。將凍存管從液氮中取出,置于37℃水浴中使之迅速融解,取出后拿到超凈臺內用75%酒精擦拭凍存管旋口處及外壁,防止污染。

    4. 將凍存管內細胞懸液轉移至含 2 ml MEF wan培養液的 15 ml 離心管內,以1000 rpm,離心 5 min,離心后將上清液吸除,另加入新鮮的 MEFwan培養液 1 ml,重懸后按照一個 T25 培養瓶鋪 1?106 的 MEF 細胞,平均加入到 T25 培養瓶中,輕輕搖勻后置于 37℃細胞培養箱。24 h 以后可以傳入小鼠胚胎干細胞。

    5.復蘇或傳代小鼠胚胎干細胞前,將 T25 培養瓶中的 MEF wan全培養液吸除,加入 2 ml 小鼠胚胎干細胞wan全培養液輕輕沖洗一遍后吸除,加入新鮮的小鼠胚胎干細胞wan全培養液待用。

    復蘇:

    1.將小鼠胚胎干細胞凍存管從液氮中取出,置于 37℃水浴中使之迅速融解,取出后拿到超凈臺內用 75?酒精擦拭凍存管旋口處及外壁,防止污染。

    2. 將凍存管內細胞懸液轉移至含 3-4 ml 小鼠胚胎干細胞wan全培養液的 15ml 離心管內,以 1000 rpm,離心 5 min。

    3. 離心后將上清液吸除,另加入新鮮的小鼠胚胎干細胞wan全培養液 2 ml,吹打懸浮。

    4. 重復吹打,制成單細胞懸液,盡量避免氣泡。

    5.  轉移至 1 個已經鋪好 MEF 細胞的 T25 培養瓶中培養。

    6. 每天更換小鼠胚胎干細胞wan全培養液。

    傳代:

    1. 一般在復蘇后第 2-3 天傳代,視克隆大小和密度而定

    2. 吸除廢液。

    3. 用 PBS(不含鈣鎂離子)輕輕沖洗一遍。

    4. 加入 1.0 ml 的 0.25%胰酶(含 EDTA)至培養瓶,輕輕晃動,使胰酶覆蓋底面,置于 37℃培養箱內消化細胞。

    5. 在顯微鏡下觀察,直至細胞層全部脫落(一般需要 1-2 min)。

    6.  加 2 ml 小鼠胚胎干細胞wan全培養液終止消化。

    7.  以 1000 rpm,離心 5 min,棄上清。

    8. 加入約 1 ml 小鼠胚胎干細胞wan培養液,多次輕輕吹打細胞, 制成單細胞懸液。

    9. 加入足量的小鼠胚胎干細胞wan全培養液,吹打混勻,細胞懸液分裝到鋪好 MEF 細胞的 T25 培養瓶中。一般地,一個 T25 培養瓶加入 5-6 ml 培養液。放入 37℃培養箱內培養。每天換液。

    傳代比例:1:4-1:7

    凍存:

    1.按傳代的方法將細胞消化下來,制成細胞懸液。

    2.  以 1000 rpm,離心 5 min,棄上清,逐滴加入已經預冷的凍存液,懸浮細胞。

    3. 按每支存管內加入 500 ml 細胞懸液分裝到凍存管內,標記細胞名稱、代數、凍存日期等基本信息。

    4.將凍存管置于程序降溫盒內,-80℃過夜,轉入液氮。

    凍存液配方:

    小鼠胚胎干細胞wan培養液 60%,ES 級 FBS 30%,DMSO 10%

     

    附:小鼠胚胎干細胞與 MEF 細胞分離的簡易方法(差速貼壁法):

    1.培養中的小鼠胚胎干細胞,按傳代的操作方法將細胞用胰酶消化并吹打成單細胞懸液后,加入適量的提前溫育好的小鼠胚胎干細胞wan培養液重懸細胞, 吹打混勻,細胞懸液分裝到無 MEF 細胞的培養皿或培養瓶(一般地,一個T25 培養瓶中培養的小鼠胚胎干細胞,在一個 10 cm 培養皿中進行差速貼壁。不要事先鋪明膠,如鋪明膠則細胞貼壁速度過快無法有效分離小鼠胚胎干細胞與 MEF 細胞)中。

    2. 培養皿或培養瓶置于 37°C 培養箱內靜置 1 小時。

    3.  1 小時后,絕大部分 MEF 細胞已貼在培養皿或培養瓶底面,而大部分小鼠胚胎干細胞仍然懸浮在培養液中。收取培養液,進行后續實驗。

     

    注意事項:

    1. 所有動物細胞均視為有潛在的生物危害性,必須在二級生物安全臺內操作,并請注意防護,所有廢液及接觸過此細胞的器皿需要滅菌后方能丟棄。

    2. 建議在復蘇凍存細胞時始終使用防護手套、衣服和戴上防護面罩。注意:凍存管浸沒在液氮中會泄漏,并會慢慢充滿液氮。解凍時,液氮轉化成氣相可能導致容器爆炸或用危險力吹掉其蓋子,從而產生飛揚的碎屑造成人員傷害。

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