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技術(shù)文章

磷酸丙糖異構(gòu)酶(TPI)試劑盒實(shí)驗(yàn)步驟

閱讀:294          發(fā)布時(shí)間:2022-4-27

磷酸丙糖異構(gòu)酶(TPI)試劑盒實(shí)驗(yàn)步驟

分光光度法50/48

  正式測(cè)定之前選擇2-3個(gè)預(yù)期差異大的樣本做預(yù)測(cè)定。

測(cè)定意義:

植物葉綠體中磷酸丙糖異構(gòu)酶是光合作用中參與calvin循環(huán)的重要酶。作用于磷酸甘油醛和磷酸二羥丙酮之間的轉(zhuǎn)化,磷酸二羥丙酮能快速透過葉綠體的包膜進(jìn)入細(xì)胞質(zhì),并在其中逐步轉(zhuǎn)化為蔗糖。

測(cè)定原理:

磷酸丙糖異構(gòu)酶將磷酸二羥丙酮轉(zhuǎn)化為3-磷酸甘油醛,3-磷酸甘油醛與NAD3-磷酸甘油醛脫氫酶的作用下生成3-磷酸甘油酸和NADH340nm處的吸光度變化反映了磷酸丙糖異構(gòu)酶的活性的高低。

自備實(shí)驗(yàn)用品及儀器:

天平、低溫離心機(jī)、研缽、震蕩儀、紫外分光光度計(jì)、1 mL石英比色皿。

試劑組成和配制:

提取液一:液體50mL×1瓶,4℃保存。

提取液二:液體50mL×1瓶,4℃保存。

試劑一:液體30mL×1瓶,4℃保存。

試劑二:粉劑×1瓶,-20℃避光保存。臨用前加5mL蒸餾水充分溶解;用不完的試劑分裝后-20℃保存,禁止反復(fù)凍融

試劑三:粉劑×1瓶,-20℃避光保存。臨用前加5 mL蒸餾水充分溶解;用不完的試劑分裝后-20℃保存,禁止反復(fù)凍融

試劑四:粉劑×1瓶,-20℃避光保存。臨用前加5 mL蒸餾水充分溶解;用不完的試劑分裝后-20℃保存,禁止反復(fù)凍融

磷酸丙糖異構(gòu)酶(TPI)試劑盒實(shí)驗(yàn)步驟酶液提取:

①總TPI提取:建議稱取約0.1g樣本,加入1mL提取液一,冰浴勻漿后超聲破碎(冰浴,200W,破碎3s,間歇7s,總時(shí)間1min),然后4℃,8000g離心10min,取上清測(cè)定。

②胞漿和葉綠體TPI酶的分離:按照植物組織質(zhì)量(g):提取液體積(mL)1510的比例(建議稱取約0.1g樣本,加入1mL提取液一),冰浴勻漿后于4℃,200g離心5min,棄沉淀,取上清在4℃,8000g離心10min,取上清用于測(cè)定胞漿TPI酶活性,取沉淀加1mL提取液二,震蕩溶解后超聲破碎(冰浴,200W,破碎3s,間歇7s,總時(shí)間1min),然后4℃,8000g離心10min,取上清測(cè)定葉綠體中TPI酶活性。

建議測(cè)定總TPI酶活性,按照步驟①提取粗酶液,若需要分別測(cè)定胞漿和葉綠體中的TPI,則按照步驟②提取粗酶液。

測(cè)定操作:

1. 分光光度計(jì)預(yù)熱30min,調(diào)節(jié)波長(zhǎng)至340nm,蒸餾水調(diào)零。

2. 1mL石英比色皿,依次加入600μL試劑一,100μL試劑二,100μL試劑三,100μL試劑四,100μL粗酶液,充分混勻,記錄340nm10s的吸光值A1310s的吸光值A2,△A=A2-A1

計(jì)算公式:

1按照樣本蛋白濃度計(jì)算

酶活單位定義:每毫克組織蛋白每分鐘生成1 nmolNADH定義為一個(gè)酶活力單位。

TPInmol/min /mg prot= ΔA÷ε×d×V反總÷(V×Cpr) ÷T=321.54×ΔA÷Cpr

2按照樣本質(zhì)量計(jì)算

酶活單位定義:每組織每分鐘生成1 nmolNADH定義為一個(gè)酶活力單位。

TPInmol/min /g 鮮重= ΔA÷ε×d×V反總÷(W ×V÷V樣總) ÷T=321.54×ΔA÷W

V反總:反應(yīng)體系總體積,1mLεNADH摩爾消光系數(shù),6.22×103 L / mol /cmd:比色皿光徑,1cmV樣:加入樣本體積,0.1mLV樣總:加入提取液體積,1mLT:反應(yīng)時(shí)間,5 minCpr:樣本蛋白質(zhì)濃度,mg/mLW:樣質(zhì)量,g

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