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豬瘟（CSF）酶聯免疫分析
閱讀：379 發布時間：2020-10-14豬瘟（CSF)酶聯免疫分析
試劑盒使用說明書
本試劑盒僅供研究使用。
96T
使用目的：
本試劑盒用于測定豬血清、血漿及相關液體樣本中豬瘟（CSF)表達。
實驗原理
本試劑盒應用雙抗體夾心法測定標本中豬瘟（CSF)表達。用純化的豬瘟（CSF)抗體包被微
孔板，制成固相抗體，可與樣品中豬瘟（CSF)相結合，經洗滌除去未結合的抗原和其他成
分后再與 HRP 標記的豬瘟（CSF)抗體結合，形成抗體-抗原-酶標抗體復合物，經過*洗
滌后加底物 TMB 顯色。TMB 在 HRP 酶的催化下轉化成藍色，并在酸的作用下轉化成終
的黃色。用酶標儀在 450nm 波長下測定吸光度（OD 值），與 CUTOFF 值相比較，從而判定
標本中豬瘟（CSF)的存在與否。
試劑盒組成
1 30 倍濃縮洗滌液
20ml×1 瓶
7
終止液
6ml×1 瓶
2
酶標試劑
6ml×1 瓶
8
陽性對照
0.5ml×1 瓶
3
酶標包被板
12 孔×8 條
9
陰性對照
0.5ml×1 瓶
4
樣品稀釋液
6ml×1 瓶
10
說明書
1 份
5
顯色劑 A 液
6ml×1 瓶
11
封板膜
2 張
6
顯色劑 B 液
6ml×1/瓶
12
密封袋
1 個
標本要求
1．標本采集后盡早進行提取，提取按相關文獻進行，提取后應盡快進行實驗。若不能
馬上進行試驗，可將標本放于-20℃保存，但應避免反復凍融
2．不能檢測含 NaN3 的樣品，因 NaN3 抑制辣根過氧化物酶的（HRP）活性。
操作步驟
1. 編號：將樣品對應微孔按序編號，每板應設陰性對照 2 孔、陽性對照 2 孔、空白對照 1
孔（空白對照孔不加樣品及酶標試劑，其余各步操作相同）
2. 加樣：分別在陰、陽性對照孔中加入陰性對照、陽性對照 50µl。然后在待測樣品孔先
加樣品稀釋液 40µl，然后再加待測樣品 10µl。加樣將樣品加于酶標板孔底部，盡量不
觸及孔壁，輕輕晃動混勻，
3. 溫育：用封板膜封板后置 37℃溫育 30 分鐘。
4. 配液：將 30 倍濃縮洗滌液用蒸餾水 30 倍稀釋后備用
5. 洗滌：小心揭掉封板膜，棄去液體，甩干，每孔加滿洗滌液，靜置 30 秒后棄去，如此
重復 5 次，拍干。
6. 加酶：每孔加入酶標試劑 50µl，空白孔除外。
7. 溫育：操作同 3。8. 洗滌：操作同 5。
9. 顯色：每孔先加入顯色劑 A50µl，再加入顯色劑 B50µl，輕輕震蕩混勻，37℃避光顯色
15 分鐘.
10. 終止：每孔加終止液 50µl，終止反應（此時藍色立轉黃色）。
11. 測定：以空白空調零，450nm 波長依序測量各孔的吸光度（OD 值）。 測定應在加終止
液后 15 分鐘以內進行。
計算和結果判定：
試驗有效性：陽性對照孔平均值≥1.00; 陰性對照平均值≤0.10
臨界值（CUT OFF）計算：臨界值=陰性對照孔平均值+0.15
陰性判定：樣品 OD 值< 臨界值（CUT OFF）者為豬瘟（CSF)陰性
陽性判定：樣品 OD 值≥ 臨界值（CUT OFF）者為豬瘟（CSF)陽性
。
注意事項
1．操作嚴格按照說明書進行，本試劑不同批號組分不得混用。
2．試劑盒從冷藏環境中取出應在室溫平衡 15-30 分鐘后方可使用，酶標包被板開封后如未
用完，板條應裝入密封袋中保存。
3．濃洗滌液可能會有結晶析出，稀釋時可在水浴中加溫助溶，洗滌時不影響結果。
4． 封板膜只限一次性使用，以避免交叉污染。
5．底物請避光保存。
6．試驗結果判定必須以酶標儀讀數為準，使用雙波長檢測時，參考波長為 630nm
7．所有樣品，洗滌液和各種廢棄物都應按傳染物處理。終止液為 2M 的硫酸，使用時必須
注意安全。
保存條件及有效期
1．試劑盒保存：；2-8℃。
2．有效期：6 個月