正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定

規格：分光光度法 50 管/48 樣

測定意義

SDH（EC 1.3.5.1）廣泛存在于動物、植物、微生物和培養細胞中。SDH 是線粒體的一種標志酶，位于線粒體內膜上的一種膜結合酶，是連接呼吸電子傳遞和氧化磷酸化的樞紐之一。此外，為多種原核細胞產能的呼吸鏈提供電子。

測定原理

SDH 催化琥珀酸脫氫生成延胡索酸，脫下的氫通過吩嗪二甲酯硫酸（PMS）傳遞還原 2,6- 二氯酚靛酚（DCPIP），并且在 600nm 處具有特征吸收峰，通過 600nm 吸光度的變化，測定 2．6-DPIP 的還原速度，代表 SDH 酶活性。

需自備的儀器和用品

可見分光光度計、水浴鍋、臺式離心機、可調式移液器、1 mL 玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。

試劑的組成和配制

試劑一：50mL×1 瓶，-20℃保存； 試劑二：10mL×1 瓶，-20℃保存； 試劑三：1mL×1 支，-20℃保存； 試劑四：液體 5mL×1 瓶，4℃保存；

試劑五：粉劑×1 支，4℃保存，臨用前加入 2mL 蒸餾水，用不完的試劑仍 4℃保存； 試劑六：粉劑×1 支，-20℃保存；臨用前加入 2mL 蒸餾水，用不完的試劑 4℃保存。

樣本的前處理

組織、細菌或細胞中胞漿蛋白與線粒體蛋白的分離：

1、 稱取約 0.1g 組織或收集 500 萬細菌或細胞，加入 1mL 試劑一和 10uL 試劑三，用冰浴勻漿器或研缽勻漿。

2、 將勻漿 600g，4℃離心 5min。

3、 棄沉淀，將上清液移至另一離心管中，11000g，4℃離心 10min。

4、 上清液即胞漿提取物，可用于測定從線粒體泄漏的 SDH（此步可選做）。

在步驟④的沉淀中加入 200uL 試劑二和 2uL 試劑三，超聲波破碎（冰浴，功率 20％或 200W， 超聲 3 秒，間隔 10 秒，重復 30 次），用于線粒體 SDH 活性測定。

測定步驟和加樣表

用蒸餾水調零后，依次加各試劑到 1 mL 玻璃比色皿中，在加入試劑六的同時開始計時，混勻，在 600 nm 波長下記錄 20 秒時的初始吸光度 A1 和 1 分 20 秒時的吸光度 A2，計算ΔA=A1-A2。

SDH 活性的計算

（1） 按樣本蛋白濃度計算

單位的定義：每 mg 組織蛋白每分鐘消耗 1 nmol 2,6-二氯酚靛酚定義為一個酶活性單位。SDH 活性（nmol/min /mg prot）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×10⁹]÷(Cpr×V 樣) ÷T=1508×ΔA÷Cpr

（2） 按樣本鮮重計算

單位的定義：每 g 組織每分鐘消耗 1 nmol 2,6-二氯酚靛酚定義為一個酶活性單位。

SDH 活性（nmol/min/g  鮮重）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×10⁹]÷(W× V樣÷V樣總) ÷T=304.6×ΔA÷W

（3） 按細菌或細胞密度計算

單位的定義：每1 萬個細菌或細胞每分鐘消耗1 nmol 2,6-二氯酚靛酚定義為一個酶活性單位。SDH 活性（nmol/min /10⁴ cell）＝[ΔA×V 反總÷（ε×d）×10⁹]÷(500×V 樣÷V 樣總)÷T=0.609×ΔA V 反總：反應體系總體積，9.5×10^-4 L；ε：2,6-二氯吲哚酚摩爾消光系數，2.1×10⁴ L / mol /cm； d：比色皿光徑，1cm；V 樣：加入樣本體積，0.03 mL；V 樣總：加入提取液體積，0.202 mL； T：反應時間，1 min；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL；W：樣本質量，g；500：細菌或細胞總數，500 萬。